这篇文章给大家聊聊关于法氏囊疫苗主要防治什么，以及预防鸡传染性法氏囊病(IBD)的疫苗怎样使用对应的知识点，希望对各位有所帮助，不要忘了收藏本站哦。
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（1）鸡传染性法氏囊病灭活疫苗：本品系用鸡传染性法氏囊病CJ-801-BKF毒株接种鸡胚成纤维细胞，收获毒液，经甲醛溶液灭活，与油佐剂混合乳化制成。本品为乳白色带粘滞性均匀乳状液，用于预防鸡传染性法氏囊病。
用法用量：本疫苗应与鸡传染性法氏囊病活疫苗配套使用。种母鸡应在10～15日龄和28～35日龄时各作一次鸡传染性法氏囊病活疫苗基础免疫。
本疫苗接种18～20周龄种母鸡，每只鸡在颈背部皮下接种1.2毫升，注射前应充分振摇疫苗瓶，使瓶底部少量粉红色液体混匀，在注射过程中也应不时振摇。
种母鸡经活疫苗两次基础免疫和一次油佐剂灭活疫苗的加强免疫后，在开产后的第12个月内的种蛋所孵子代，14天内能抵抗野毒感染。
本疫苗应避光在4℃保存，不能冻结，6个月内有效。36℃可保存6天。
（2）鸡传染性法氏囊病中等毒力株活疫苗：本品系用鸡传染性法氏囊病中等毒力BJ836或J87或K85或B87毒株，接种易感鸡胚或易感鸡胚成纤维细胞培养，收获感染鸡胚组织或细胞培养液，加适宜保护剂，经冷冻真空干燥制成，称为鸡胚苗或细胞苗。本品为类白色或黄褐色海绵状疏松团块，易与瓶壁脱离，加稀释液后迅速溶解。用于预防雏鸡的传染性法氏囊病。本疫苗可供各品种雏鸡使用。
用法用量：①点眼、口服接种剂量，每羽份鸡胚苗不能低于1000个半数鸡胚致死量；细胞苗不能低于5000个半数细胞培养感染量；饮水免疫剂量均应加倍。②对有母源抗体雏鸡，当琼脂扩散试验（AGP）阳性率在50%以下时，首次免疫时间应在7～14日龄内进行，间隔1～2周后进行第2次免疫；当AGP抗体阳性率在50%以上时，首免时间应在21日龄时进行，间隔1～2周后，进行第2次免疫。本疫苗仅供有母源抗体的雏鸡免疫用。
应在-10℃以下保存，其有效期暂定为1年；4℃为30天，22～25℃为7天。
（3）鸡传染性法氏囊病低毒力株活疫苗：本品系用鸡传染性法氏囊病低毒力A80株，接种易感鸡胚或鸡胚成纤维细胞培养，收获感染鸡胚或细胞培养液，加适宜保护剂，经冷冻真空干燥制成。为海绵状疏松粉红色团块，易与瓶壁脱离，加稀释液后，迅速溶解。用于早期预防雏鸡传染性法氏囊病。疫苗稀释后，用于无母源抗体雏鸡首次免疫，可点眼、滴鼻、肌内注射或饮水免疫，每只鸡免疫剂量应不低于1000个半数鸡胚致死量。
注意：①免疫鸡必须健康无病，对有IBD抗体鸡免疫效果差。②饮水免疫时，其水质必须不含氯等消毒剂；饮水器要清洁，忌用金属饮水器。③饮前应视地区、季节、饲料等情况，停水4～8小时，饮水器应置于不受日光照射的阴凉处，应在1小时之内饮完。④严防散毒，用过的苗瓶、器具等应消毒处理，不要将疫苗污染到其他地方或身上。本品在0～4℃保存不超过12个月，-18℃保存不超过18个月。
鸡传染性法氏囊病是由传染性法氏囊病病毒引起的，一种主要危害雏鸡的高度接触性免疫抑制性传染病，俗称腔上囊炎，又称为冈博罗病。下面我们了解一下鸡传染性法氏囊病治疗方法。
一、鸡传染性法氏囊病的治疗方法
在饮水中加入复方口服补液盐以及维生素c、维生素k、维生素b或1%-2%奶粉，以保持鸡体水、电解质、营养平衡，促进康复。
鸡舍及环境严格消毒：发病鸡舍应隔离饲养，每天上午、下午各进行一次带鸡消毒。对环境、人员、工具也应进行消毒。选用对鸡群有效的抗生素。病雏应早期治疗，使用高免血清或卵黄抗体0.5~l毫升／羽，大鸡1-2毫升／羽，皮下或肌肉注射，必要时次日再注射一次。同时辅以肾肿消等药物，促进肾脏解毒。同群尚未有症状的鸡一同注射。抗体也可在发病前注射，经10-15天再重复一次，可以起到预防作用。
二、鸡传染性法氏囊病的防治原则
采用全进全出饲养体制，全价饲料。鸡舍换气良好，温度、湿度适宜，消除各种应激条件，提高鸡体免疫应答能力。严格卫生管理，隔离封闭饲养（特别是60日龄内的鸡），杜绝传染来源。
进鸡前鸡舍（包括周围环境）按消毒程序进行严格消毒，消毒液喷洒一清扫一高压水冲洗_消毒液喷洒一火焰喷烧（地面、墙壁、鸡笼等）一甲醛熏蒸一封闭1-2周后换气再进鸡。饲养鸡期间，定期进行带鸡气雾消毒，可采用0.3%次氯酸钠或过氧乙酸等，按30-50毫升／米3消毒30分钟。饮水中也可加入适当的消毒剂。
三、鸡传染性法氏囊病活疫苗怎么使用
目前使用的疫苗主要有灭活苗和活苗两类。活疫苗按照病毒毒力和抗原性差异，可分为温和型或温和中等毒力型（b87、nf8株）、中等毒力型(d78株、pbc98、lkt、lzd228株)、中等偏强或强毒力型（w2512株、j-i株）。灭活苗主要有组织灭活苗和油佐剂灭活苗，包含ib-dv标准毒株和变异毒株。使用灭活苗对已接种活苗的鸡群效果好，并使母源抗体保护雏鸡长达4-5周。
疫苗接种途径有注射、滴鼻、点眼、饮水、气雾以及胚胎接种等多种免疫方法，可根据疫苗的种类、性质、鸡龄、饲养管理等情况进行具体选择。
免疫程序的制定应根据琼脂扩散试验或elisa方法，对鸡群的母源抗体、免疫后抗体水平进行监测，以便选择合适的免疫时间，有效地发挥疫苗的保护作用。如用标准抗原作agp测定母源抗体水平，若1日龄阳性率
如用间接elisa测定抗体水平，雏鸡抵抗感染的母源抗体水平应为et≥350。如果未作抗体水平检测，一般种鸡采用2周龄较大剂量中毒型弱毒疫苗首免，4-5同龄附加强免疫一次，产蛋前（18-20周龄）和38周龄时各注射油佐剂灭活苗一次，一般可保持较高的母源抗体水平。肉用雏鸡和蛋鸡视抗体水平多在2周龄和4-5周龄时进行两次弱毒苗免疫。
DNA疫苗(DNA vaccine)，又称“裸”DNA疫苗(naked DNA vaccine)、基因疫苗(genetic vaccine)，亦有核酸疫苗(nucleic acid immunizaiton)、多核苷酸疫苗(poly nucleotide vaccine)等相关名称，是近年来基因治疗研究中所衍生并发展起来的一个新的研究领域。它是指将编码某种蛋白质抗原的重组真核表达载体直接注射到动物体内，使外源基因在活体内表达，产生的抗原激活机体的免疫系统，从而诱导特异性的体液免疫和细胞免疫应答。该疫苗既具有减毒疫苗的优点。同时又无逆转的危险，因此越来越受到人们的重视，被看作是继传统疫苗及基因工程亚单位疫苗之后的第三代疫苗[1]。
DNA疫苗的研制是基因工程技术在疫苗研究中的另一重要突破。将一种抗原基因重组到真核表达载体，直接或经包装注入体内表达出相应抗原，诱导机体产生免疫应答。这是极有发展潜力的一种新疫苗[2]。
DNA疫苗；动物医学
近年来，许多畜禽病毒性传染病，已不能依靠传统疫苗如灭活疫苗、弱毒疫苗等对其进行防治，DNA疫苗的出现使得这一状况得到改善。编码病毒、细菌和寄生虫等不同种类抗原基因的质粒DNA，能够引起脊椎动物如哺乳类、鸟类和鱼类等多个物种产生强烈而持久的免疫反应。DNA疫苗被称为继灭活疫苗和弱毒疫苗、亚单位疫苗之后的“第三代疫苗”，具有广阔的发展前景。
1 DNA疫苗简介
DNA疫苗又称核酸疫苗或基因疫苗，是编码免疫原或与免疫原相关的真核表达质粒DNA(有时也可是RNA)，它可经一定途径进入动物体内，被宿主细胞摄取后转录和翻译表达出抗原蛋白，此抗原蛋白能刺激机体产生非特异性和特异性2种免疫应答反应，从而起到免疫保护作用。
DNA疫苗具有许多优点：①DNA接种载体(如质粒)的结构简单，提纯质粒DNA的工艺简便，因而生产成本较低，且适于大批量生产；②DNA分子克隆比较容易，使得DNA疫苗能根据需要随时进行更新；③DNA分子很稳定，可制成DNA疫苗冻干苗，使用时在盐溶液中可恢复原有活性，因而便于运输和保存；④比传统疫苗安全，虽然DNA疫苗具有与弱毒疫苗相当的免疫原性，能激活细胞毒性T淋巴细胞而诱导细胞免疫，但由于DNA序列编码的仅是单一的一段病毒基因，基本没有毒性逆转的可能，因此不存在减毒疫苗毒力回升的危险(Davis等，1999)，而且由于机体免疫系统中DNA疫苗的抗原相关表位比较稳定，因此DNA疫苗也不象弱毒疫苗或亚单位疫苗那样，会出现表位丢失(Donnelly等，1999)；⑤质粒本身可作为佐剂，因此使用DNA疫苗不用加佐剂，既降低成本又方便使用(Babiuk等，1999)；⑥将多种质粒DNA简单混合，就可将生化特性类似的抗原(如来源于相同病原菌的不同菌株)或1种病原体的多种不同抗原结合在一起，组成多价疫苗，从而使1种DNA疫苗能够诱导产生针对多个抗原表位的免疫保护作用，使DNA疫苗生产的灵活性大大增加。
2 DNA疫苗的应用
2.1.1伪狂犬病病毒(PRV)将编码PRVgC或gD基因的质粒DNA免疫猪，能诱导保护性抗体的生成和细胞免疫的产生；将编码gB、gC、gD的多种质粒DNA混合使用，对引导免疫反应更有效(Gerdts V等，1997；Rooij E M等，1998)。
2.1.2猪流感病毒(HIV) Mackling等(1998)的试验结果表明，编码HIV1株的血凝素(HA)和核衣壳蛋白(NP)质粒DNA用金颗粒包裹，以基因枪轰击猪的表皮进行免疫后，HA质粒DNA能使猪产生粘膜免疫反应而对流感病毒的攻击具有抵抗力，DNA疫苗引起的免疫反应与灭活疫苗相当。
2.1.3猪呼吸与繁殖综合征病毒(PRRS) PRRS基因片段ORF5编码的主要囊膜糖蛋白GP5是该病毒的3个主要结构蛋白之一。含有ORF5基因质粒DNA能诱导猪抗GP5特异性中和抗体的产生；且免疫猪的外周血单核细胞在GP5重组蛋白存在时能够发生转化反应，显示了GP5特异性细胞免疫的产生(Pirzadeh B等，1998)。Meng(2000)将GP5基因克隆入巨细胞病毒(CMV)早期启动子的控制之下构建成真核表达质粒而制备出DNA疫苗，用其免疫仔猪后可诱导抗体的产生，实验室攻毒后显示出良好的保护效果。
2.1.4口蹄疫病毒(FMDV)将FMDV全长基因组的cDNA克隆到质粒，并去除其编码核衣壳蛋白VP1的细胞结合部位的DNA序列，构建成质粒DNA以肌肉或皮内注射，初次免疫后2～4周，可使所有的猪都产生特异的病毒中和抗体，攻毒试验中呈现部分保护作用(Ward G等，1997)。
2.1.5猪瘟病毒(CSFV)余兴龙等(2000)构建了CSFV主要保护性抗原E2基因4种不同的真核表达质粒。小鼠免疫试验结果表明，E2基因上不同的功能区对基因疫苗的免疫应答有很大影响，有信号肽序列的E2基因可诱导特异性的免疫反应，且无跨膜区序列的E2基因所诱导的免疫应答反应比有跨膜区序列的强，而无信号肽序列的E2基因所诱导的免疫应答反应比有跨膜区序列的强，而无信号肽序列的E2基因则不能诱导产生CFSV特异性的免疫反应。攻毒保护试验结果表明，免疫家兔最少可抵抗10个最小感染剂量(MID)的猪瘟兔化弱毒苗(HCIV)的攻击；免疫猪可抵抗致死剂量的CFSV石门株强毒的攻击。
2.2.1牛呼吸道合胞体病毒(BRSV)用BRSV G基因构建的DNA疫苗，以无针方式免疫小牛时比皮内或肌肉注射引起的免疫反应强烈。
2.2.2牛疱疹病毒(BHV)用表达BHV�1 gD基因的质粒DNA疫苗免疫牛，能产生很高的中和抗体；攻毒试验后发现，免疫组比非免疫组的病毒排放量明显减少(schrijver R S等，1997)。此疫苗通过肌肉或皮内注射均可引导免疫反应的产生。但皮内注射引起的免疫反应更强(孟松树等，2000)。�
2.2.3牛病毒性腹泻病毒(BVDV)以表达BVDV1型主要糖蛋白E2的质粒DNA肌肉注射小牛，可产生病毒中和抗体和抗原特异的细胞增殖反应；免疫后16周进行攻毒试验，发现免疫牛能产生针对BVDV1型和2型的血清中和抗体强烈的记忆抗体反应，对牛有部分免疫保护作用(Cox G J等，1993)。�
2.3.1新城疫病毒(DNV) Sakaguchi等(1996)将NDV F基因插入质粒载体，F基因的表达受巨细胞病毒早期增强子和鸡β�肌动蛋白启动子控制。1周龄试验鸡肌肉内注射重组质粒后，有2/5注射线性质粒的鸡和4/5注射线性质粒与脂质体转染剂混合物的鸡产生了高水平针对F蛋白的抗体，而注射闭环状质粒的鸡不能产生抗体。免疫9周后，体内有抗体的试验鸡都能抵抗致死剂量NDV强毒的攻击。�
2.3.2鸡传染性喉气管炎病毒(ILT)将分别构建的含有鸡传染性喉气管炎病毒王岗株gB、gC和gD基因的重组真核表达质粒及空载体质粒分组注射雏鸡，攻毒后观察免疫保护效果。结果表明，重组质粒诱导了免疫应答，免疫保护率达到79%，该基因疫苗可以作为预防ILV的1个补充。�
2.3.3禽流感病毒 Robinson等(1993)最先将DNA疫苗用于鸡，以编码禽流感病毒H7N7株血凝素(HA)基因的质粒(DNA)由不同途径(静脉、腹腔、皮下注射)免疫3周龄鸡，可对致死剂量的H7N7株病毒鼻内攻击产生50%的保护。Fyna等(1993)为了研究DNA疫苗对鸡最有效的免疫途径，将100～200μg编码H7�HA的质粒DNA通过静脉、肌肉、皮下注射、点眼、囊内、滴鼻等方式免疫3周龄鸡。4周后进行第2次免疫。第6周，用致死剂量的H7N7攻击，免疫鸡的存活率达10%～63%，而对照组的存活率只有2%。其中，多种途径如静脉和肌肉注射共同免疫的效果，比单一途径如肌肉注射、点眼、法氏囊内、滴鼻免疫效果好。Kodihalli等(1997)将编码H5�HA的质粒DNA以0.25、0.5、1.5或10μg用基因枪免疫鸡，4周后以100LD�50的Ty/lre/83株鼻内免疫进行攻击，低至0.25μg剂量的DNA可使50%的免疫鸡存活。而1、5、10μg的剂量可完全抵抗致死剂量病毒的攻击。DNA疫苗对致死剂量的抗原变异株也可提供95%的保护，证实DNA流感疫苗具有广阔的发展前景。
国内研制的H7亚型血凝素基因DNA疫苗，在极小的使用剂量下即可成功诱导免疫保护反应，并有效阻断同源低致病力禽流感病毒在机体内的感染和排毒；研制的H5亚型血凝素DNA疫苗，具有良好的免疫原性，肌肉注射途径即可获得对同源强毒攻击的免疫保护，并能有效阻断免疫保护存活鸡机体的排毒。
3 DNA疫苗的安全性虽然人们对于使用DNA疫苗的安全性存有疑虑，担心DNA可能会整合到宿主细胞的染色体上而造成插入突变，但众多研究结果并未发现有插入突变的现象。质粒DNA在动物体内会缓慢降解，不会造成动物的自体免疫(陈化兰等，1998)，也不随卵子和精子传入子代体内，它随生物链进入其他物种体内时也会失活，而且对环境的污染很小，因此其危险性远低于现用疫苗。
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